1.Subject

Kjeldahl법을 통한 crude protein의 정량

 

2.Object

Kjeldahl법을 통하여 crude protein에 포함된 질소의 양을 통해 단백질의 양을 측정한다.

 

3.Principle

조단백질

단백질은 다른 성분과 달리 평균 16%의 질소를 함유하고 있는 것이 특징이다. 질소는 단백질에서 특유의 성분이지만, 질소를 함유하고 있다고 하여 반드시 단백질이라고는 할 수 없다. 식품 중에는 아미노산, purine 및 pyrimidine 염기의 유도체, amide 화합물, 핵산 화합물, 요소 등의 여러 가지 비단백태의 질소화합물이 함유되어 있으며, 이들은 종류에 따라서 그 조성이 다르다. 일반적으로 총 질소에 6.25를 곱한 것(질소계수 : 100 / 16 = 6.25)이 며 총 단백질 양을 나타내는 것은 아니다. 따라서 이것을 조단백질(crude protein)이라고 한다.

 

Kjeldahl법

Kjeldahl법은 유기질소를 정량하는 가장 흔한 방법으로 중화적정을 이용한 정량법이며 주로단백질, 우유, 곡류, 및 밀가루에 존재하는 질소를 정량하는 방법이다. 이 과정은 직접적이며 특별한 장치가 필요 없고, 수많은 시료의 일상분석에 쉽게 적용된다.

이 방법의 원리는 Kjeldahl장치를 이용하여 조단백질의 총 질소 함량을 측정하여 질소의 %를 단백질로 전환하는 것으로서, 식품 내 모든 질소는 단백질로서 존재한다고 가정하고 식품 단백질 내 질소의 % 함량에 기초한 질소계수(F)를 사용한다.

Kjeldahl법은 분해, 증류, 중화, 적정의 네단계를 거친다.

1) 분해

시료에 진한 황산과 분해 촉진제를 가해 가열하면 식품성분의 분해가 시작되어 유기물의 탈수탄화와 산화환원반응이 일어나 시료 중의 질소는 암모니아로 되고 분해플라스크 중에 잔존하는 진한 황산과 다음과 같이 반응하여 황산암모늄의 형태로 분해액 중에 포집된다.

 

실험과정에서 첨가한 분해촉진제는 진한 황산과 다음과 같은 반응을 한다.

 

그러나 가열, 분해 중에는 제거되고, 본 반응은 반복되어 용액은 더욱 진하게 되며 유기물의 반응은 격렬하다.

 

질소-단백질 환산계수

조단백질은 일정한 비율로 질소를 함유하기 때문에 조단백질의 질소량을 정량하여 여기에 특정한 환산 계수를 곱하여 산출한다. 단백질이 함유하는 질소의 비율은 조단백질의 종류에 따라 다르므로 각각의 특정한 환산 계수가 정해져 있으나 개별 계수를 알 수 없는 조단백질은 모두 6.25의 계수를 쓴다.

 

 

 

4.Material

① 진한 H2SO4 : 시료분해용 (d: 1.83g/ml)

② 혼합촉매 : K2SO4 9g과 CUSO4 . 5H2O 1g 을 유발로 분쇄, 혼합하여 사용한다. 이때 K2SO4 는 황산에 용해하여 그의 비등점을 높여주고 분해를 촉진하는 역할을 한다.

③ 0.1N-H2SO4 용액

④ 0.1N-NAOH 용액

⑤ 중화용 NAOH용액 : 아질산을 함유하지 않은 NAOH 450g을 물 1L에 녹여 냉각 후 폴리에틸렌에 넣어 하룻밤 정도 정치시켜 탄산염을 침전시키고, 상층액만을 사용한다.

⑥ 혼합지시약 : 0.1% methyl red alcohol 용액과 0.1% methylene blue alcohol 용액의 등량 혼합용액으로 pH5에서 적자색, pH 4.5서 무색, pH 5.6에서 녹색을 띤다.

⑦ 비등석 : 경석을 직경 1~3mm 정도로 분쇄시켜 물로 씻고 500℃ 이상의 온도에서 가열하거나 외경 1~1.5MM경도의 유리관을 사용한다.

⑧ 분해장치 : 300~500ml 경질플라스크를 사용한다.

 

 

 

 

 

5.Method

 

1)시료준비

● 시료 0.5g을 유산지에 정량하여 분해플라스크에 넣는다.

● 분해플라스크에 혼합촉매제를 넣는다.

2)분해 및 증류

● 분해플라스크에 H2SO4 15ml을 넣고 kjeldahl장치에서 420℃에서 45분간 분해한다.

 

분해 및 증류과정에서의 Kjeldahl장치 사용법

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

① 삼각플라스크(E)에 0.1N H2SO4 표준용액 20ml + 혼합지시약 4~5방울을 넣는다.

② 증류플라스크(C)에 희석 분해액 (10ml)를 깔대기(F)를 통해서 넣는다.

(증류수로 용기에 묻은 시료액을 씻어 넣음)

③ 수증기 발생플라스크(A)에 물(1/2)을 넣고 항온기로 가열한다.

④ 플라스크(A)에서 수증이가 밀려나오면 깔대기(F)를 통하여 중화용 NaOH용액을 적당량

가하여 증류플라스크(C)의 액이 알칼리가 되도록 한다.

⑤ 증류플라스크(C)에서 발생되는 암모니아는 플라스크(A)에서 나오는 수증기에 밀려서 냉

각관(D)를 통하여 삼각플라스크(E)로 들어가서 황산과 반응하여 (NH4)2SO4를 형성한다.

(약 30~40분간 증류)

⑥ 증류가 끝나면 삼각플라스크(E)를 들어내고 냉각관의 끝부분(G)을 증류수로 잘 씻어

삼각플라스크(E)안에 넣은 후 가열을 멈춘다.

⑦ 마지막으로 세척 과정에서는 삼각플라스크(E)를 들어내고 증류수를 넣은 용기를 놓고,

코크(c)를 열고, 코크(b)를 닫으면 감압에 의하여 용기의 물이 역류되어 증류플라스크(C)

가 세척되며 이때 역류병(B)에 모인 물은 코크(a)를 열어 제거한다.

 

 

blank test 란 시료이외의 물질(시약, 황산, 증류수 등)에 질소가 존재할 수 있기 때문에

오차를 줄이기 위해서 실시하는 실험이다.

(Kjeldahl장치 사용 시 처음에는 blank test를(증류 플라스크에 물을 넣고 실험)을 한 후

두 번째 본 실험(증류 플라스크에 분해액을 넣음)을 하는 두 번의 조작을 거친다.)

 

3)중화

● 혼합지시약(Methyl Red+Bromocresol Green)과 4%H3BO3이 들어있는 붕산용액(붉은색)

을 20ml 삼각 플라스크에 측정하여 넣는다.

● 식힌 플라스크를 Hood에서 꺼낸 후 붕산용액을 kjeldahl증류 및 중화장치에 연결한다.

이때 kjeldahl 증류 및 중화장치의 한쪽에는 35%의 NaOH를 다른 한쪽에는 증류수를 장

치하여 증류 및 중화 과정을 통해 시료가 초록색으로 변하는 것을 확인한다.

 

 

 

4)적정

● 증류&중화과정이 끝난 삼각플라스크에 포집된 NH4H2BO3를 0.1N HCl를 이용하여 적정

하여 붉은색으로 변함 여부를 확인한다.(시료적정량)

● kjeldahl 증류&중화장치를 이용해 분해플라스크를 세척한다.

● 최종의 결과값을 계산 수식에 넣어 조단백질의 양을 구한다.

 

6. RESULT

ISP를 시료로 하여 시료의 채취량을 0.5g 으로 하고 혼합촉매 10g, 진한 H2SO4 20ml를 가하여 분해 한뒤 분해액을 200ml로 희석하여 20mL 채취한 뒤 증류과정을 시행하였다. 0.1N - H2SO4표준용액의 수기 채취량은 20ml이고 0.1N - NAOH 표준용액의 역가는 1.032 이였다. 여기서 0.1N - NAOH 용액의 적정소비량은 공시험때 18.9mL였고 본시험때 14ml였다. 그리고 콩단백의의 질소 - 단백질 환산 계수는 6.25이다. 이것으로 ISP의 조단백량을 계산하면 다음과 같다.

 

 

7. DISCUSSION & CONCLUSION

비공개 ^^

 

8.Reference

식품분석(이론과 실험), 신광출판사, 신효선, p.72 ~ 76

표준식품분석학, 지구문화사, 채수규 , p.242 ~ 255

최신분석화학, 자유아카데미, Daniel C. Harris (계산 수식 참고)

http://www.dslab.co.kr/src/main/indexpage.php(켈달장치의 구조 그림)

NK Chem 일반화학, megaMD, 남궁원, p.249

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1.Subject

DNS method에 의한 Reducing Sugar Determination

2.Object

환원당(reducing sugar)의 성질을 이용하여 디나이트로살리실산(3,5-dinitrosalicylic acid, DNS)이 환원되어 생성된 3-amino-5-nitrosalicylic acid의 흡광도를 측정하여 설탕의 당을 정량한다.

3.Principle

 

환원당 (reducing sugar) Aldose의 카르보닐 산소가 여러 물질을 환원시킬 수 있다(즉, 1개 이상의 전자를 물질에 제공한다.)는 사실을 잘 알려져 있다. Ketose 역시 물질들을 환원시킬 수 있지만 aldose 만큼 쉽게 일어나지는 않는다. 이러한 현상은 aldose와 ketose의 고리구조가 대부분 저절로 열려져 환원과정에 참여하는 카르보닐기가 노출되어 당이 직선 사슬구조를 이루기 때문에 일어난다. 2가 구리()를 1가 구리()로 환원시킬 수 있는 당을 환원당이라 한다. Surcrose(설탕)와 같은 비환원당은 를 로 환원시킬 수 없다. Benedict 실험은 당의 환원성을 동정하는 데 쓰여질 수 있다. 예를들어, 당을 구리-구연산 용액(를 포함하는 Benedict 시약)속에서 가열시켜 만약 환원당이 존재하면 를 로 환원시켜 붉은 벽돌색의 침전물을 형성한다.

 

비색법 (colorimetry)

시료 속의 구하려는 성분 자체나, 시료에 어떤 시약 용액을 넣을 때에 백색광의 일부분을 흡수하여 나타내는 색깔의 짙기를 표준물질의 세기와 비교, 측정하여 성분의 함령을 결정하는 분석법이 비색법이다. 고체나 기체의 발색을 이용할 수도 있으나, 보통 용액의 발색을 이용할 때가 가장 많다. 곧 시료를 용액으로 만들어 분리, 농축 또는 방해하는 물질을 제거하고, 적당한 시약을 넣어 발색반응으로 나타내는 색깔의 짙기를 비교·측정하는 조작을 포함하게 된다. 옛날의 분석은 가시광선에만 한정되었으나, 측정기기가 발달함에 따라 가시광선보다 파장이 긴 쪽이나 짧은 범위까지의 전자복사선을 써서 시료 속의 이온 또는 분자에 의한 선택적인 빛의 흡수의 세기를 측정함으로써 시료의 성분농도를 알게 되었다. 이러한 방법을 통틀어 흡수광도법이라고 하며, 작은 입자가 분산되어 있는 서스펜션의 흐림도를 투과광의 세기로서 측정하는 방법은 비탁법이라고 한다. 백색광을 그대로 쓰지 않고, 광원으로부터 나온 복사선을 필터와 같은 분광기로 어떤 특정한 좁은 파장 범위의 빛으로 분광하여 측정용액에 통과시킬 때 투과하여 나오는 복사선의 세기를 측정하는 방법은 비색법이며, 필터 대신에 프리즘이나 회절발과 같은 단색화 장치를 써서 매우 좁은 파장범위의 단색광을 측정용액에 통과시킬 때는 특히 분광광도법이라 한다. 흡수광도법의 장점은 예민한 발색반응에 의하여 미량의 성분을 간편 신속하게 정량할 수 있는 점이다. 곧 무게분석법이나 부피분석법에서는 0.1% 이하의 성분이 포함되어 있을 때에는 분석의 오차가 매우 커지나, 흡수광도 분석법은 % 범위의 미량성분의 정량에 적당하며, 조건만 잘 조절 선정하면 상대오차 1% 정도 이하에서도 분석할 수 있다.

 

환원당의 적정에 의한 정량법

 

 

 

 

이 방법은 자유 카보닐 그룹이 존재하는 환원당이라 불리우는 물질을 이용한다. 이것은 예를들면 과당에 포도당과 케톤기가 들어있는 것처럼 알데하이드 작용기의 산화를 포함합니다. 동시에, 3.5-dinitrosalicylic acid은 산성 조건 하에서 3-amino-5-nitrosalicylic acid으로 환원된다. ► aldehyed group →(산화) carboxyl group ► 3.5-dinitrosalicylic acid →(환원) 3-amino-5-nitrosalicylic acid 용해된 산소는 그 자체가 색깔 반응을 하는데 충분하지 않은 포도당 산화에 의해서 방해받을 수 있기 때문에 아황산염은 용해된 산소를 흡수하는 시약에 추가된다. 위의 반응은 1몰의 설탕은 1몰의 3.5-dinitrosalicylic acid와 반응할 것임을 보여준다.

◆ DNS(dinitrosalicylic acid) 시약의 제조 일반적으로 방향족 화합물에 질산이 작용하여 니트로기를 도입하는 반응을 질화(Nitration)라고 하며 생성물을 나이트로 화합물이라고 한다. 벤젠족에 있어서 선입기가 등의 양성기 일 때는 니트로기가 주로 메타자리에 들고, 등의 음성기일 때는 주로 오쏘 및 파라 자리에 들어간다. 살리실산을 dinitration 하면 3,5-dinitrosalicylic acid이 생성된다.

4.Material

maltose(환원당,1mg/ml)

Sample – Fructose(미지농도 - 제조 후 10배, 100배 희석)

– 설탕(미지농도) : 측정

3,5-DNS : 0.1g, Na-K Tartrate(Rochelle salt) : 30g, NaOH 0.1g, d.w: 100ml

저울, 메스실린더, 부피플라스크, 얼음, test tube, 교반기,

분광광도계(Spectrophotometer), 피펫

5.Method

(1) Test tube 10개를 준비 후, maltose를 농도 별로 7개 tube에 넣고(표준용액),

Sample 3개를 각각 3개의 tube에 넣는다. 그 후 DNS 2ml를 tube에 넣는다.

(2) 반응 10분(under heat)

(3) 온도를 낮추어 반응을 정지시키기 위해 15분간 Icing.

(4) UV abs 측정(550nm)

(5) Calibration Curve를 구한 후 sample의 정량범위를 확인한다.

 

 

 

7. DISCUSSION & CONCLUSION

[데이터 분석]

DNS method는 Lowry method과 마찬가지로 흡광도 측정을 통하여 물질을 정량하는 실험이다. 단지 측정하는 물질이 단백질에서 당으로 바뀐 정도의 차이가 있다. 우리가 이번실험에서 측정하여 정량하고자 했던 당은 환원당으로써 환원말단을 가진다. 실험에 대조군으로는 설탕을 사용하였는데 이것은 환원 말단을 가지지 않는 물질이다.

실험과정은 maltose를 이용하여 표준곡선을 그린 후, 각각의 sample의 흡광도를 비교하여

Sample의 미지농도를 측정하는 것이다.

각각의 Sample의 농도는 다음과 같다. 1823.53 ㎍/ml(10배 희석), 176.47 ㎍/ml(100배 희석) 측정 결과 희석도는 약 1:10의 비율을 띠므로 sample의 희석은 비교적 잘 이루어졌다. 단, Standard Curve의 곡선이 고르지 못하지만, R2의 값이 0.872934을 나타낸 것으로 보아신뢰성 있는 그래프라고 생각된다.

 

디스커션은 되도록비공개로 ^^

 

8.Reference

생화학, LARRY G.SCHEVE, 유한문화사, p.157대학 분석 화학, 이흥락, 학문사, p.431~432염료화학, 김공주, 대광서림, p.42~43생화학 요론, 김창한, 유한문화사, p.26

http://blog.naver.com/istyle333?Redirect=Log&logNo=60095902755

http://blog.naver.com/PostView.nhn?blogId=ahreum319&logNo=50024773268

http://blog.naver.com/PostView.nhn?blogId=kjh880129&logNo=20067006702

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

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